伤口培养标本采集

关键点

  • 仅在怀疑感染时采集伤口培养,并严格执行污染控制步骤。
  • 采样前先清洁/冲洗伤口,去除可能扭曲结果的表面碎屑。
  • 使用明确拭子技术采集存活组织(非脓液、腐肉、焦痂或坏死组织)。
  • 在患者在场时床旁贴签,并立即送检。

所需器材

  • 无菌伤口培养拭子及转运系统(按政策选择需氧/厌氧系统)
  • 无菌生理盐水
  • 30-60 mL 注射器配套无菌冲洗装置
  • 无菌 2 x 2 纱布(湿纱布与干纱布)
  • 采样后用于覆盖伤口的新无菌敷料用品
  • 生物危害转运袋与完整填写的检验申请单

操作步骤

  1. 核对医嘱/政策,确认患者身份,并解释流程。
  2. 执行手卫生,完成安全检查,并在有指征时预先镇痛。
  3. 按政策准备清洁/无菌工作区并暴露伤口。
  4. 移除旧敷料并规范弃置,随后执行手卫生/更换手套。
  5. 用无菌生理盐水(或认可商业冲洗装置)冲洗/清洁伤口,去除表面污染物。
  6. 用无菌生理盐水湿纱布擦拭伤口表面,再用干无菌纱布吸去多余液体。
  7. 执行手卫生并戴新手套。
  8. 打开拭子转运系统并按厂商说明准备。
  9. 若伤口床较干燥,用无菌生理盐水润湿拭子。
  10. 在靠近伤口中心处识别约 1 cm2 的存活组织区域。
  11. 在该区域旋转拭子尖端约 5 秒,并给予足够压力以挤出组织液。
  12. 取出拭子并立即置入转运培养基/容器。
  13. 采用无菌无接触技术覆盖新无菌敷料。
  14. 在患者在场时于床旁标记标本(姓名、日期/时间、伤口部位/来源、采集者身份信息,按政策执行)。
  15. 在申请单中注明当前/近期抗生素治疗信息;临床可行时在抗菌药开始前采集。
  16. 将标本置于生物危害转运袋并立即送检。
  17. 记录采集方法、伤口所见、所用敷料以及通知/医嘱情况。

特殊注意事项

  • 标本质量:在政策支持下,优先采集存活组织而非仅表浅引流物。
  • 污染控制:污染阶段与清洁阶段之间更换手套;避免拭子接触非无菌表面。
  • 转运时效:延迟会降低培养可靠性并影响药敏解读。
  • 抗生素时机:既往抗菌药可改变培养阳性率;应明确记录治疗状态。

常见错误

  • 仅拭取脓液/腐肉/焦痂会导致不能良好代表存活组织生物负荷。
  • 跳过预清洁/冲洗会导致污染更高且结果易误导。
  • 转运延迟或标记不完整会导致结果无效/不安全并延误治疗。
  • 申请单遗漏抗生素病史会导致对阴性或改变培养结果产生误判。

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